Хімія і хімічна технологія
Технологічний режим вирощування дріжджів моделювали в лабораторних умовах в колбах об'ємом 250 мл на термостатированной гойдалці при температурі 30 ° С протягом 10-12 год. Початковий обсяг живильного середовища становив 30 мл, кінцевий (без урахування відбору проб) - 70 мл. В ході культивування контролювали концентрації біомаси, амонійного азоту і фосфору в середовищі, проводили мікробіологічний контроль (морфологія, чисельність брунькуються, живих і мертвих клітин). [C.29]
У тому ж семестрі в лабораторному практикумі з загальної біотехнології ці ж студенти виконують лабораторну роботу з вивчення процесу бродіння з метою отримання етилового спирту. Як субстрат використовується товарна глюкоза або сахароза, посівним матеріалом служать продажні пекарські дріжджі. Здавалося б, логічно пов'язати два процеси. На лабораторному практикумі з ЗХТ не просто проводити реакцію гідролізу в пробірках, моделювати реальний технологічний процес отримання та напрацювання гідролізатів, з наступною нейтралізацією, очищенням готового продукту. Змінюючи параметри процесу. можна вивчати його закономірності, вести його контроль і контроль якості продукту. Напрацьовані в лабораторному практикумі з ЗХТ гідролізати можна використовувати в якості сировини в практикумі з біотехнології, що допомогло б студентам знайти взаємодії [c.171]
Вага дріжджів в середовищі з біотином (нг / мл) контроль-224 0.025-246 0,05-269 0,1-295 0.2-331 мкг. [C.37]
Вихід дріжджів в порівнянні з контролем Вироблення дріжджів з 1 т сировини, кг Знімання дріжджів з 1 т деревини,% до контролю [c.136]
Наливають вміст склянки в трубку для бродіння таким чином. щоб закрите коліно трубки було заповнене, а в широкій частині трубки було деяка кількість рідини. Заповнена таким чином трубка буде служити контролем, так як самі дріжджі можуть містити в собі деяку кількість зброджуваний цукрів. [C.150]
Для того щоб домогтися експресії генів цих ферментів в дріжджах S. erevisiae, довелося провести делецию (видалення) интронов з клонованих в E. oli нативних генів і поставити ці гени під контроль дріжджових промоторів і кінцевих регуляторних послідовностей. [C.106]
Пре парат Біотіновая активність, в% до біотину Ингибирование зростання (вага дріжджів в% до їх вазі в контролі) [c.37]
Для дослідів з циклопами використовують таку ж посуд, як і для дослідів з Дафна. Циклопів годують парамецій, яких легко розводити в лабораторних умовах в конічних колбах (об'ємом по 0,6 л), підгодовуючи їх пекарські дріжджі і згущеним молоком, додаючи корм в колбу до отримання дуже слабкою каламуті (воду в колби наливати на 1-2 см нижче краю). Враховують виживання протягом 30 днів. відкладання кількості яєць, поява науплій і їхня здатність до виживання, обчислюють реальну шлодовітость. Оцінка знаходять ту концентрацію, при якій реальна плодючість не менше 50 і 75% від контролю. Тривалість досвіду 30 днів. [C.50]
Доброякісність гідролізатів. отриманих від варок деревної сировини з мулом, і їх біохімічна придатність для отримання кормових дріжджів оцінювалася методом безперервного культивування мікроорганізмів на досвідчених субстратах. На гидролизатах, отриманих спільним гідролізом деревної сировини з активним мулом. самими врожайними виявилися дріжджі Кандида скотти і Тріхоспорон. Результати дослідів показали, що при однаковій швидкості росту. рівній 0,27 ч. утилізація редукуючих речовин дріжджами, культивованими на гидролизатах з добавками мулу, вьше, ніж в контрольних дослідах. Вихід біомаси дріжджів при вирощуванні на гидролизате, отриманому при введенні в апарат 4% мулу до маси абс. сухої деревини. склав 58,4% від вмісту редукуючих речовин або 117,3% від контролю, а при введенні 15% мулу - 59,0% від вмісту редукуючих речовин або 118,5% від контролю. Знімання дріжджів з 1 т абс. сухої деревини відповідно на 36,6 і 15,8 кг вище в порівнянні з контрольною варінням. Сольове харчування при вирощуванні дріжджів на гідролізату, приготованих з добавками мулу, можна скоротити на 25-50% без шкоди для виходу і якості дріжджів [203]. [C.103]
У третьому стовпці табл. 8.1 наводяться результати досвіду. в якому дріжджі інкубували в аеробних умовах в присутності 0,4 мМ 2,4-динитрофенола (ДНФ). ДНФ роз'єднує фосфорилирование і окислення в дихальному ланцюгу він нарущает сполучення між переносом електронів і фосфорилюванням, після чого дихання протікає вже без контролю з боку фосфорилювання. Додавання ДНФ практично виключає фосфорилирование в дихальної ланцюга. і водень, відщеплюється в циклі трикарбонових кислот. вже не може використовуватися для енергетичних цілей. Доступним для використання ока- "зиваєтся тільки високоенергетичний фосфат. Утворюється при розщепленні. Сукцинил-СоА. Результати досвіду показують, що в присутності ДНФ споживання глюкози зростає до величини, що спостерігається в анаеробних умовах. Що пов'язано з його роз'єднувальним Дією. [C.269]
З безлічі способів подрібнення сировини в промисловому виробництві ферментних препаратів застосування знайшли різні способи механічного руйнування тканин і клітин (за допомогою м'ясорубок, куттеров, гомогенізатори, розтиранням). Крім того, використовують дію органічних розчинників. автолиз, наприклад дріжджів, рідше - заморожування і відтавання. Дія ультразвуку або вводяться ззовні ферментов- лізоциму, целлюлаз і т. П-застосовується мало. Видалення баластних білків короткочасним прогріванням або зміною pH середовища використовується в багатьох виробництвах. Можна відзначити, що ці операції, легко проводяться в лабораторних умовах. стають досить небезпечними в виробництві, коли вони виконуються з великими кількостями речовин і в зв'язку з цим сповільнюються. Тут необхідний ретельний контроль стабільності (денатурації і інактивування) основного виділяється білка. Це міркування, втім, відноситься практичес ки до всіх операцій препаративної хімії ферментів. [C.156]
З табл. 5 видно, що описаний раніше режим обробки на культурах дріжджів не давав вираженого дезинфікуючого ефекту на ранніх стадіях культивування число клітин після електрообробки в досвіді і контролі практично було однаковим, через 5 год культивування зниження числа клітин в досвідчені в порівнянні з контролем незначно. На більш пізніх стадіях культивування (через 24 і 48 ч) в обробленої електрострумом культурі відзначено зниження числа живих клітин на порядок. [C.24]
Швидкість бродіння і кількість спирту. утворюється з 100 кг гексоз, залежать від якості сусла. від раси дріжджів. їх фізіологічного стану і від наявності інфекції. Якість сусла обумовлюється концентрацією і складом гексоз, т. Е. Зброджуваний цукрів, наявністю поживних солей (фосфору, азоту, калію) і концентрацією токсичних речовин. які пригнічують дріжджі або знижують їх спіртообразующую здатність. Крім того, для нормальних умов життєдіяльності дріжджів сусло повинно мати певні pH і температуру. Контроль за роботою бродильной батареї полягає в тому, щоб, визначивши якість і кількість дріжджів і зброджуваний цукрів в суслі, розрахувати швидкість потоку сусла, при якому буде забезпечений максимальний вихід спирту з збродженого цукру при повному відбродила. і простежити за виконанням встановленого технологічного регламенту. [C.147]